Adenilato quinase

A adenilato quinase (EC 2.7.4.3), tamén chamada ADK ou mioquinase, é un encima fosfotransferase que cataliza a interconversión dos varios fosfatos de adenosina (ATP, ADP e AMP). A ADK monitoriza constantemente os niveis de nucleótidos fosfato dentro da célula e xoga un importante papel na homeostase da enerxía celular.

Adenilato quinase
Modelo 3D de fitas/superficie da adenilato quinase en complexo coa bis(adenosín)tetrafosfato (ADP-ADP)
Identificadores
SímboloADK
PfamPF00406
InterProIPR000850
PROSITEPDOC00104
SCOPe1ake / SUPFAM
Adenilato quinase
Adenilato quinase de Bacillus stearothermophilus
Identificadores
SímboloADK_lid
PfamPF05191
InterProIPR007862
PROSITEPDOC00104
SCOPe1ake / SUPFAM
Adenilato quinase
Identificadores
Número EC 2.7.4.3
Número CAS 2598011
Bases de datos
IntEnz vista de IntEnz
BRENDA entrada de BRENDA
ExPASy vista de NiceZyme
KEGG entrada de KEGG
MetaCyc vía metabólica
PRIAM perfil
Estruturas PDB RCSB PDB PDBe PDBj PDBsum
Imaxe de PDB 3HPQ mostrando o esqueleto do encima ADK e os residuos clave como barras e etiquetados segundo a súa situación en Escherichia coli, cristalizado co inhibidor Ap5A.

Substrato e produtos editar

A reacción catalizada é:

ATP + AMP ⇔ 2 ADP

A constante de equilibrio varía coas condicións, pero está preto de 1.[1] Así, a ΔGo para esta reacción está próxima a cero. No músculo de diversas especies de vertebrados e invertebrados, a concentración de ATP é normalmente de 7 a 10 veces maior que a de ADP, e xeralmente 100 veces maior que a de AMP.[2] A velocidade da fosforilación oxidativa está controlada pola dispoñibilidade de ADP. Así, a mitocondria intenta manter os niveis de ATP altos debido á acción combinada da adenilato quinase e os controis da fosforilación oxidativa.

Isocimas editar

Ata agora identificáronse nove isoformas da proteína ADK humana. Mentres que algunhas están presentes na maioría dos tecidos do corpo, algunhas están localizadas só en tecidos ou partes da célula específicos. Por exemplo, a ADK7 e a ADK8 só se encontran no citosol das células; e a ADK7 encóntrase no músculo esquelético, mentres que ADK8 non.[3] Non só varía a localización das isoformas dentro da célula, senón que a unión ao substrato do encima e a cinética da transferencia do fosforilo son tamén diferentes. A ADK1, é a isocima ADK máis abundante no citosol, ten unha Km unhas mil veces máis alta que as Km de ADK7 e 8, indicando unha unión moito máis feble da ADK1 co AMP.[4] A localización subcelular dos encimas ADK faise incluíndo unha secuencia diana na proteína.[3] Cada isoforma tamén ten unha diferente preferencia polos nucleósidos trifosfato (NTPs). Algúns só usan o ATP, mentres que outros aceptan GTP, UTP e CTP como portadores do fosforilo.

Algunhas destas isoformas prefiren outros NTPs. Hai unha GTP:AMP fosfotransferase mitocondrial, tamén específica para a fosforilación de AMP, que só pode usar GTP ou ITP como doante de fosforilos.[5] A ADK foi tamén identificada en diferents especies de bacterias e en lévedos.[6] Coñécense outros dous encimas máis relacionados coa familia da ADK, que son a uridín monofosfoquinase de lévedos e a UMP-CMP quinase de mofos mucilaxinosos. Algúns residuos están conservados nas distintas isoformas, o que indica o esenciais que son para a catálise. Unha das áreas máis conservadas inclúe un residuo Arg, cuxa modificación inactiva o encima, xunto cun Asp que se sitúa na fenda catalítica do encima e participa nunha ponte salina.

Subfamilias editar

Mecanismo editar

A transferencia de fosforilos só ocorre cambiando á conformación Pechada o dominio 'LID Aberto' do encima. Isto causa unha exclusión de moléculas de auga que deixa os substratos próximos uns a outros,[7] diminuíndo a barreira de enerxía para o ataque nucleofílico polo α-fosforilo do AMP sobre o grupo γ-fosforilo do ATP, que orixina a formación de ADP por transferencia do grupo γ-fosforilo ao AMP. Na estrutura cristalina do encima ADK de Escherichia coli co inhibidor Ap5A, o residuo Arg88 únese ao Ap5A no grupo α-fosfato. Observouse que a mutación R88G causa unha perda do 99% da actividade catalítica deste encima, o que suxire que este residuo está estreitamente implicado na transferencia de fosforilos.[8] Outro residuo moi conservado é a Arg119, que está na rexión de unión da adenosina na ADK, e actúa facendo de sándwich coa adenina no sitio activo. Suxeriuse que a promiscuidade destes encimas ao aceptaren outros NTPs débese ás interaccións relativamente sen importancia da base no peto de unión do ATP.[9] Unha rede positiva de residuos conservados (Lys13, Arg123, Arg156 e Arg167 na ADK de E. coli) estabiliza a acumulación de cargas negativas sobre o grupo fosforilo durante a transferencia. Dous residuos de aspartato distais únense á rede de arxininas, causando que o encima sufra un pregamento e reduza a súa flexibilidade. Tamén é necesario o [[magnesio] como cofactor, esencial para incrementar a electrofilicidade do fosfato sobre o AMP, aínda que este ión magnesio só se mantén no peto activo por interaccións electrostáticas e disóciase doadamente.[9]

Estrutura editar

 
Residuos de ADKE. coli implicados na unión do substrato

A flexibilidade e plasticidade permite que as proteínas se unan a ligandos, formen oligómeros, se agreguen e realicen traballos mecánicos.[10] Grandes cambios conformacionais nas proteínas desempeñan un importante papel na sinalización celular. A adenilato quinase é unha proteína de transdución de sinais; así, o balance entre as conformacións regula a actividade da proteína.[11]

 
Esquema que describe o ciclo cinético xenérico da familia do encima ADK. O complexo ternario está etiquetado.

Un estudo de 2007 feito por Whitford et al. mostra as conformacións da ADK cando se une ao ATP ou AMP.[10] O estudo mostra que hai tres conformacións ou estruturas relevantes da ADK: CORE, Aberta e Pechada. Na ADK, hai dous pequenos dominios chamados o LID e o NMP.[12] O ATP únese no peto formado polos dominios LID e CORE. O AMP únese ao peto formado polo dominios NMP e CORE. O estudo de Whitford tamén descubriu que rexións localizadas da proteína despregábanse durante as transicións conformacionais. Este mecanismo reduce a tensión e mellora a eficiencia catalítica. O despregamento local é o resultado das enerxías de tensión en competencia na proteína.[10]

A estabilidade termodinámica local dos dominios de unión ao substrato ATPlid e AMPlid é significativamente menor cando se compara co dominio CORE da ADKE. coli.[13] Ademais, os dous subdominios (ATPlid e AMPlid) poden pregarse de "maneira non cooperativa".[13] A unión dos susbstratos causa unha preferencia polas conformacións 'pechadas' entre todas as que mostrea a ADK (nas paisaxes de enerxía). Estas conformacións 'pechadas' hipotetízase que axudan a retirar a auga do sitio activo para evitar hidrólises inútiles de ATP ademais de contribuíren a optimizar o aliñamento dos substratos para a transferencia de fosforilos.[14] Ademais, o apoencima aínda mostrea as conformacións 'pechadas' dos dominios ATPlid e AMPlid en ausencia de substratos.[7] Cando se compara a taxa de apertura do encima (que permite a liberación do produto) e a taxa de peche que acompaña a unión do substrato, a apertura é o proceso máis lento.

Función editar

Monitorización metabólica editar

A capacidade dunha célula de medir termodinamicamente os niveis enerxéticos proporciónalle un método para monitorizar os procesos metabólicos.[15] Ao monitorizar continuamente e alterar os niveis de ATP e os outros adenil fosfatos (niveis de ADP e AMP), a adenilato quinase é un importante regulador do gasto de enerxía a nivel celular.[16] A medida que cambian os niveis de enerxía baixo deiferentes estreses metabólicos a adenilato quinase pode entón xerar AMP, e este composto actúa como unha molécula de sinalización nas seguintes fervenzas de sinalización. Este AMP xerado pode, por exemplo, estimular varios receptores dependentes de AMP como os que interveñen nas vías glicolíticas, canles de K-ATP, e proteína quinase activada por AMP (AMPK).[15] Factores comúns que inflúen nos niveis de nucleótidos de adenina, e, por tanto, na actividade da ADK, son o exercicio, o estrés, cambios nos niveis de hormonas e a dieta.[15] Isto facilita a descodficación da información celular ao catalizar intercambios de nucleótidos na íntima “zona detectora” dos sensores metabólicos.[15]

Lanzadeira de ADK editar

A adenilato quinase está presente nos compartimentos mitocondrial e miofibrilar da célula, e proporciona dous fosforilos de alta enerxía (β e γ) do ATP para que sexan transferidos entre moléculas de nucleótidos de adenina.[15][16] En esencia, a adenilato quinase transporta ATP a sitios de alto consumo de enerxía e retira o AMP xerado no decurso destas reaccións. Estas fosfotransferencias secuenciais teñen en último extremo como resultado a propagación de grupos fosforilos entre conxuntos de moléculas de ADK.[15] Este proceso pode entenderse como unha "cadea humana" (neste caso de moléculas) de ADK que produce cambios no fluxo metabólico local sen cambios aparentes globais nas concentracións de metabolitos.[15] Este proceso é extremadamente importante para a homeostase global da célula.[15]

Importancia en enfermidades editar

Deficiencia de nucleósido difosfato quinase editar

A nucleósido difosfato quinase é un encima que cataliza in vivo a síntese dependente de ATP de ribo- e desoxirribonucleósidos trifosfato. En bacterias mutadas de Escherichia coli que tiñan unha nucleósido difosfato quinase alterada, a adenilato quinase realizaba unha función encimática dobre, xa que complementaba a deficiencia en nucleósido difosfato quinase.[17]

Anemia hemolítica editar

A deficiencia en adenilato quinase no eritrocito está asociada coa anemia hemolítica.[18] Esta é unha rara eritroencimopatía hereditaria que nalgúns casos está asociada con atraso mental e discapcidade psicomotora.[19] Informouse de polo menos dous pacientes que experimentaron ictericia neonatal e esplenomegalia e requiriron transfusións de sangue debido a esta deficiencia.[20] Noutro paciente un fragmento anormal con substitucións A → G homocigotas e heterocigotas no codón 164 causaron graves deficiencias na ADK de eritrocitos.[21] Estudouse tamén o caso de dous irmáns que tiñan deficiencia na ADK do eritrocito, pero un non presentou evidencias de hemólise.[22]

A AK1 e o refluxo coronario post-isquémico editar

O knockout de AK1 altera a sincronía entre o fosfato inorgánico e o recambio dos sitios que gastan ATP e os que o sintetizan. Isto reduce a comunicación do sinal enerxético no corazón postísquémico e precipita o refluxo coronario inadecuado despois de isquemia e reperfusión.[23]

Deficiencia en ADK2 editar

A deficiencia en adenilato quinase 2 (AK2) en humanos causa defectos hematopoéticos asociados con perda de audición.[24] A disxénese reticular é unha forma autosómica recesiva de inmunodeficiencia combinada humana. Tamén se caracteriza por unha alteración da maduración linfoide e unha detención temperá da diferenciación na liñaxe linfoide. A deficiencia en AK2 ten como resultado a ausencia ou unha gran diminución na expresión de proteínas. A AK2 exprésase especificamente na estría vascular do oído interno, o que indica por que as persoas con deficiencia de AK2 teñen perda de audición.[24]

Adaptacións estrututrais editar

A ablación xenética de AK1 diminúe a tolerancia ao estrés metabólico. A deficiencia de AK1 induce unha variación específica de tipo de fibra muscular en grupos de transcritos na glicólise e o metabolismo mitocondrial e en produtos xénicos que definen eventos estruturais e mioxénicos.[25] Isto apoia o metabolismo enerxético muscular.

Deficiencia de ADK plastidial en Arabidopsis thaliana editar

Na planta Arabidopsis thaliana observouse un maior cerecemento e unha elevación na biosíntese de aminoácidos durante a fotosíntese asociados coa dificiencia de adenilato quinase plastidial.[26]

Notas editar

  1. A NIST Thermodynamics of Enzyme-Catalyzed Reactions database, http://xpdb.nist.gov/enzyme_thermodynamics/enzyme1.pl Arquivado 09 de novembro de 2016 en Wayback Machine., Goldberg RN, Tewari YB, Bhat TN (novembro de 2004). "Thermodynamics of enzyme-catalyzed reactions--a database for quantitative biochemistry". Bioinformatics 20 (16): 2874–7. PMID 15145806. doi:10.1093/bioinformatics/bth314. , dá constantes de equilibrio, buscar adenylate kinase en enzymes
  2. Beis I, Newsholme EA (outubro de 1975). "The contents of adenine nucleotides, phosphagens and some glycolytic intermediates in resting muscles from vertebrates and invertebrates". The Biochemical Journal 152 (1): 23–32. PMC 1172435. PMID 1212224. doi:10.1042/bj1520023. 
  3. 3,0 3,1 Panayiotou C, Solaroli N, Karlsson A (abril de 2014). "The many isoforms of human adenylate kinases". The International Journal of Biochemistry & Cell Biology 49: 75–83. PMID 24495878. doi:10.1016/j.biocel.2014.01.014. 
  4. Panayiotou C, Solaroli N, Xu Y, Johansson M, Karlsson A (febreiro 2011). "The characterization of human adenylate kinases 7 and 8 demonstrates differences in kinetic parameters and structural organization among the family of adenylate kinase isoenzymes" (PDF). The Biochemical Journal 433 (3): 527–34. PMID 21080915. doi:10.1042/BJ20101443. 
  5. Tomasselli AG, Noda LH (xaneiro de 1979). "Mitochondrial GTP-AMP phosphotransferase. 2. Kinetic and equilibrium dialysis studies". European Journal of Biochemistry (en inglés) 93 (2): 263–7. PMID 218813. doi:10.1111/j.1432-1033.1979.tb12819.x. 
  6. Cooper AJ, Friedberg EC (maio de 1992). "A putative second adenylate kinase-encoding gene from the yeast Saccharomyces cerevisiae". Gene 114 (1): 145–8. PMID 1587477. doi:10.1016/0378-1119(92)90721-Z. 
  7. 7,0 7,1 Henzler-Wildman KA, Thai V, Lei M, Ott M, Wolf-Watz M, Fenn T, Pozharski E, Wilson MA, Petsko GA, Karplus M, Hübner CG, Kern D (decembro de 2007). "Intrinsic motions along an enzymatic reaction trajectory". Nature 450 (7171): 838–44. Bibcode:2007Natur.450..838H. PMID 18026086. doi:10.1038/nature06410. 
  8. Reinstein J, Gilles AM, Rose T, Wittinghofer A, Saint Girons I, Bârzu O, Surewicz WK, Mantsch HH (maio de 1989). "Structural and catalytic role of arginine 88 in Escherichia coli adenylate kinase as evidenced by chemical modification and site-directed mutagenesis". The Journal of Biological Chemistry 264 (14): 8107–12. PMID 2542263. doi:10.1016/S0021-9258(18)83156-8. 
  9. 9,0 9,1 Müller CW, Schulz GE (marzo de 1992). "Structure of the complex between adenylate kinase from Escherichia coli and the inhibitor Ap5A refined at 1.9 A resolution. A model for a catalytic transition state". Journal of Molecular Biology 224 (1): 159–77. PMID 1548697. doi:10.2210/pdb1ake/pdb. 
  10. 10,0 10,1 10,2 Whitford PC, Miyashita O, Levy Y, Onuchic JN (marzo de 2007). "Conformational transitions of adenylate kinase: switching by cracking". Journal of Molecular Biology 366 (5): 1661–71. PMC 2561047. PMID 17217965. doi:10.1016/j.jmb.2006.11.085. 
  11. Schrank TP, Bolen DW, Hilser VJ (outubro de 2009). "Rational modulation of conformational fluctuations in adenylate kinase reveals a local unfolding mechanism for allostery and functional adaptation in proteins". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 106 (40): 16984–9. Bibcode:2009PNAS..10616984S. PMC 2761315. PMID 19805185. doi:10.1073/pnas.0906510106. 
  12. Daily MD, Phillips GN, Cui Q (xullo 2010). "Many local motions cooperate to produce the adenylate kinase conformational transition". Journal of Molecular Biology 400 (3): 618–31. PMC 2902635. PMID 20471396. doi:10.1016/j.jmb.2010.05.015. 
  13. 13,0 13,1 Rundqvist L, Adén J, Sparrman T, Wallgren M, Olsson U, Wolf-Watz M (marzo de 2009). "Noncooperative folding of subdomains in adenylate kinase". Biochemistry 48 (9): 1911–27. PMID 19219996. doi:10.1021/bi8018042. 
  14. Olsson U, Wolf-Watz M (novembro de 2010). "Overlap between folding and functional energy landscapes for adenylate kinase conformational change". Nature Communications 1 (8): 111. Bibcode:2010NatCo...1..111O. PMID 21081909. doi:10.1038/ncomms1106. 
  15. 15,0 15,1 15,2 15,3 15,4 15,5 15,6 15,7 Dzeja P, Terzic A (abril de 2009). "Adenylate kinase and AMP signaling networks: metabolic monitoring, signal communication and body energy sensing". International Journal of Molecular Sciences 10 (4): 1729–72. PMC 2680645. PMID 19468337. doi:10.3390/ijms10041729. 
  16. 16,0 16,1 Dzeja PP, Chung S, Faustino RS, Behfar A, Terzic A (abril de 2011). "Developmental enhancement of adenylate kinase-AMPK metabolic signaling axis supports stem cell cardiac differentiation". PLOS ONE 6 (4): e19300. Bibcode:2011PLoSO...619300D. PMC 3083437. PMID 21556322. doi:10.1371/journal.pone.0019300. 
  17. Lu Q, Inouye M (xuño de 1996). "Adenylate kinase complements nucleoside diphosphate kinase deficiency in nucleotide metabolism". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 93 (12): 5720–5. Bibcode:1996PNAS...93.5720L. PMC 39127. PMID 8650159. doi:10.1073/pnas.93.12.5720. 
  18. Matsuura, S.; Igarashi, M.; Tanizawa, Y.; Yamada, M.; Kishi, F.; Kajii, T.; Fujii, H.; Miwa, S.; Sakurai, M.; Nakazawa, A. (xuño de 1989). "Human adenylate kinase deficiency associated with hemolytic anemia. A single base substitution affecting solubility and catalytic activity of the cytosolic adenylate kinase.". J Biol Chem 264 (17): 10148–55. PMID 2542324. doi:10.1016/S0021-9258(18)81779-3. 
  19. Abrusci P, Chiarelli LR, Galizzi A, Fermo E, Bianchi P, Zanella A, Valentini G (agosto de 2007). "Erythrocyte adenylate kinase deficiency: characterization of recombinant mutant forms and relationship with nonspherocytic hemolytic anemia". Experimental Hematology 35 (8): 1182–9. PMID 17662886. doi:10.1016/j.exphem.2007.05.004. 
  20. Corrons JL, Garcia E, Tusell JJ, Varughese KI, West C, Beutler E (xullo de 2003). "Red cell adenylate kinase deficiency: molecular study of 3 new mutations (118G>A, 190G>A, and GAC deletion) associated with hereditary nonspherocytic hemolytic anemia". Blood 102 (1): 353–6. PMID 12649162. doi:10.1182/blood-2002-07-2288. 
  21. Qualtieri, A.; Pedace, V.; Bisconte, MG.; Bria, M.; Gulino, B.; Andreoli, V.; Brancati, C. (decembro de 1997). "Severe erythrocyte adenylate kinase deficiency due to homozygous A → G substitution at codon 164 of human AK1 gene associated with chronic haemolytic anaemia.". Br J Haematol 99 (4): 770–6. PMID 9432020. doi:10.1046/j.1365-2141.1997.4953299.x. 
  22. Beutler E, Carson D, Dannawi H, Forman L, Kuhl W, West C, Westwood B (agosto de 1983). "Metabolic compensation for profound erythrocyte adenylate kinase deficiency. A hereditary enzyme defect without hemolytic anemia". The Journal of Clinical Investigation 72 (2): 648–55. PMC 1129224. PMID 6308059. doi:10.1172/JCI111014. 
  23. Dzeja PP, Bast P, Pucar D, Wieringa B, Terzic A (outubro de 2007). "Defective metabolic signaling in adenylate kinase AK1 gene knock-out hearts compromises post-ischemic coronary reflow". The Journal of Biological Chemistry 282 (43): 31366–72. PMC 3232003. PMID 17704060. doi:10.1074/jbc.M705268200. 
  24. 24,0 24,1 Lagresle-Peyrou C, Six EM, Picard C, Rieux-Laucat F, Michel V, Ditadi A, Demerens-de Chappedelaine C, Morillon E, Valensi F, Simon-Stoos KL, Mullikin JC, Noroski LM, Besse C, Wulffraat NM, Ferster A, Abecasis MM, Calvo F, Petit C, Candotti F, Abel L, Fischer A, Cavazzana-Calvo M (xaneiro de 2009). "Human adenylate kinase 2 deficiency causes a profound hematopoietic defect associated with sensorineural deafness". Nature Genetics 41 (1): 106–11. PMC 2612090. PMID 19043416. doi:10.1038/ng.278. 
  25. Janssen E, de Groof A, Wijers M, Fransen J, Dzeja PP, Terzic A, Wieringa B (abril de 2003). "Adenylate kinase 1 deficiency induces molecular and structural adaptations to support muscle energy metabolism". The Journal of Biological Chemistry 278 (15): 12937–45. PMID 12562761. doi:10.1074/jbc.M211465200. 
  26. Carrari F, Coll-Garcia D, Schauer N, Lytovchenko A, Palacios-Rojas N, Balbo I, Rosso M, Fernie AR (xaneiro de 2005). "Deficiency of a plastidial adenylate kinase in Arabidopsis results in elevated photosynthetic amino acid biosynthesis and enhanced growth". Plant Physiology 137 (1): 70–82. PMC 548839. PMID 15618410. doi:10.1104/pp.104.056143. 

Véxase tamén editar

Ligazóns externas editar

Este artigo incorpora textos en dominio público procedentes de Pfam e InterPro IPR000850